Chemické konzervanty patří mezi látky prodlužující údržnost potravin a krmiv tím, že je chrání před znehodnocením způsobeném nežádoucími mikroorganismy. Kromě chemické konzervace je možné použít i konzervace založené na fyzikálních principech (teplem, chladem, sušením). Použití konzervantů je prevencí intoxikace bakteriálního a plísňového původu. Konzervanty v zákoně o krmivech č. 91/1996 ve znění pozdějších předpisů se definují v § 2 písmeno g) jako doplňkové látky. Rozumějí se g) doplňkovými látkami látky používané ve výživě zvířat za účelem příznivého ovlivnění vlastností krmiv nebo živočišných produktů, uspokojení požadavků výživy zvířat, zlepšení živočišné produkce zejména ovlivněním stravitelnosti krmiv, doplnění potřeby živin zvířat nebo zajištění specifických potřeb výživy zvířat v určitém období a zmírnění škodlivých vlivů způsobených výkaly zvířat nebo ovlivňující životní prostředí zvířat.
Vlastní chemické konzervanty se mohou klasifikovat podle různých hledisek – struktury, biologických účinků, původu, ale dosud jednoznačná klasifikace neexistuje.
Do této sekce jsou zařazeny doposud tyto látky:
- parabeny
- mravenčí kyselina
- octová kyselina
Konzervanty se obecně mohou isolovat se všech druhů matrice destilací s vodní parou za přídavku síranu hořečnatého a kyseliny citronové nebo kyseliny sírové. Z destilátu se poté konzervanty reextrahují do diethyletheru.[1]
Druhý způsob extrakce je přímá extrakce diethyletherem, extrakt se vysuší síranem sodným bezvodým. Diethyletherový extrakt se pak odpaří k suchu a odparek se rozpustí v methanolu nebo ethanolu. Při přímé extrakci diethyletherem dochází k současné extrakci tuků, barviv a dalších lipofilních látek a takto získané extrakty je nutné většinou ještě přečistit.
U tekutých vzorků se konzervanty stanovují po jejich naředění a odstranění pevných části filtrací a případného CO2 na ultrazvukové lázni. Stanovují se UV detekcí v jejich maximech: benzoová kyselina 228 nm, sorbová 259 nm, parabeny 255 nm.
Při extrakci z tuhých vzorků se extrahují organickými rozpouštědly s následným přečištěním extraktu – kapalina - kapalina, SPE. V případě tučných vzorků se extrahují diethyletherem a poté se extrakt dvakrát extrahuje do 0,1 M NaOH, ten se okyselí (neutralizuje a naředí methanolem nebo se opět může reextrahovat do diethyletheru. Pro kyselinu benzoovou byl vypracován postup přímé extrakce nasyceným roztokem chloridu sodného (s přídavkem hydroxidu sodného). Takto získaný extrakt se zneutralizuje kyselinou chlorovodíkovou, přidá se její nadbytek a provede se čtyřnásobná extrakce kyseliny benzoové do chloroformu. Chloroform se odpaří pod proudem dusíku za laboratorní teploty k suchu. Odparek se rozpustí v methanolu nebo ethanolu.
Přečištění na Extrelutu (pro vzorky, které poskytují emulze – mléčné výrobky - jogurt, sušené mléko, sýry): vzorek se naředí 0,5 M H2SO4 a rozmixuje a doplní do definovaného objemu. Poté se pipetuje na kolonu Extrelut, nechá se stát 15 minut a pak yse eluuje chloroform-isopropanol 9:1, odpaří k suchu. Destilace s vodní parou má několik výhod – odstranění matrice, obecně použitelné pro všechny matrice, není nutno dále čistit extrakt. Při SPE přečištění dostáváme dobré výsledky výtěžnosti 94 – 102 %. Kolonka se kondicionuje (methanol, se NaH2PO4 pH 3,5) a poté se nanese extrakt a přečistí se NaH2PO4 pH 3,5 a konzervanty se eluují acetonitrilem, extrakt se naředí se pufrem NaH2PO4 pH 3,5 a stanoví HPLC.[2]
Pomineme-li klasické metody stanovení konzervantů (spektrofotometrické nebo titrační metody), používají se především metody separační, zejména HPLC metody, které nevyžadují derivatizaci analytů.
Separace HPLC
Separace parabenů je možná pomocí isokratické eluce na reverzní fázi C18 za použití mobilní fáze methanol - voda 40+60 nebo 50 mM KH2PO4 – ACN (40+60) při 230 nm.[3]
Tyto mobilní fáze se často modifikují: ACN – 50 mM NaH2PO4 (pH 3,5) (30+70), 10 mM NaH2PO4 pH 2,6 – MeOH (1+1). K separaci byla použita také stacionární mobilní fáze Ultra Aqueous C18, mobilní fáze 50 mM NaH2PO4 (pH 2,5)+ACN (99+1).[4]
K dobré separaci byla použita také iontová párová chromatografie: acetonitril – voda – 200 mM KH2PO4 pH 3,6 (7+12+1) obsahující 2 mM cetyltrimethylamonniumbromid.[5]
Pro stanovení benzoové a sorbové kyseliny – reverzní fáze c18 s mobilní fází o složení methanol – fosfátový pufr pH 6,7 (8+92)[6] nebo na kyanové fázi 2 % kyselinou octovou – methanolem (19+1) jako mobilní fáze.[7]
|
Analyt |
HPLC podmínky |
Literatura |
||
|
stacionární fáze |
mobilní fáze |
detekce |
||
|
BA, SA, parabeny |
mBondapak C18 |
fosfátový pufr - methanol (20+80) nebo 40+60 |
UV 235 nm |
|
|
BA, SA, parabeny |
LiChrosorb Si 60 (150x4.6 mm) |
heptan – diisopropylether – kyselina octová led. (88+12+0,1) |
UV 230 nm |
|
|
|
mBondapak C18 (300x4,6 mm) |
voda – acetonitril – H3PO4 (90+10+0,5) |
UV 230 nm |
|
|
BA, SA |
mBondapak CN |
2 % octová kyselina – methanol (95+5) |
UV 227 nm |
|
|
BA, SA, parabeny, PA, FA |
LiChrosorb RP-18 (250x4,6 mm) |
amoniak (pH4,4) – acetonitril (80+20) |
UV 225, 232 nm |
|
|
BA, SA |
RP C18 |
30 mM fosfátový pufr (pH 6,5) – methanol (95+5) |
UV 227 nm |
|
|
BA, SA, parabeny |
Nucleosil 5 C18 (150x4,3 mm) |
acetonitril – voda – 200 mM KH2PO4 pH 3,6 (7+12+1) obsahující 2 mM cetyltrimethylamonniumbromid |
UV 235 nm |
5 |
Vysvětlivky: BA – benzoová kyselina; SA – sorbová kyselina, PA – propionová kyselina, FA – kyselina mravenčí
http://www.foodstandards.gov.uk/multimedia/pdfs/mb_017_apr2002.pdf
[1] Velíšek J.: Chemie Potravin, OSSIS Tábor 1999.
[2] LiChrolut Application, Merck, SPE and HPLC determination of 4 selected preservatives in beer.
[3] Lee H.S., Rouseff R.L., Fisher J.F.: J.Food.Sci. 51, 568 (1986).
[4] Restek HPLC, applicationsnote #59398, analysis preservastives using HPLC
[5] Terada H., Sakabe Y.: J. Chromatogr. 346, 333 (1985).
[6] Hannisdal A.: Z. Lebensm. Unters. Forsch. 194, 517 (1992).
[7] Carnevale J.: Food Tech. Aust. 32, 302 (1980).
[8] Leuenberger U., Gauch R., Baumgartner E.: J. Chromatogr 173, 343 (1979).
[9] Aitzetmüller K., Arzberger E.: Z. Lebensm. Unters. Forsch. 178, 279 (1984).
[10] Kantasubrata J., Imamkhasani S.: ASEAN Food J. 6, 155 (1991).
[11] Hild J., Gertz C.: Z. Lebensm. Unters. Forsch. 170, 110 (1980).
[12] Bui L.V., Cooper C.: J. Assoc. off. Anal. Chem. 70, 892 (1987).